המומחה הרפואי של המאמר
פרסומים חדשים
מגבלות, סכנות וסיבוכים של השתלת תאים
סקירה אחרונה: 04.07.2025

כל תוכן iLive נבדק מבחינה רפואית או נבדק למעשה כדי להבטיח דיוק עובדתי רב ככל האפשר.
יש לנו קווים מנחים קפדניים המקור רק קישור לאתרים מדיה מכובד, מוסדות מחקר אקדמי, בכל עת אפשרי, עמיתים מבחינה רפואית מחקרים. שים לב שהמספרים בסוגריים ([1], [2] וכו ') הם קישורים הניתנים ללחיצה למחקרים אלה.
אם אתה סבור שתוכן כלשהו שלנו אינו מדויק, לא עדכני או מפוקפק אחרת, בחר אותו ולחץ על Ctrl + Enter.
רפואה פלסטית רגנרטיבית מבוססת על יישום קליני של התכונות הטוטיפוטנטיביות והפלוריפוטנטיות של תאי גזע עובריים ותאי גזע אב, המאפשרות יצירה in vitro ו-in vivo של קווי תאים ספציפיים המאכלסים מחדש רקמות ואיברים פגומים של אדם חולה.
האפשרות האמיתית של שימוש בתאי גזע עובריים ובתאי גזע של רקמות סופיות (מה שנקרא תאי גזע "בוגרים") של בני אדם למטרות טיפוליות אינה מוטלת עוד בספק. עם זאת, מומחים מהאקדמיות הלאומיות והרפואיות של ארה"ב (Stem cells and the future regenerative medicine, National Academy Press) ומהמכון הלאומי לבריאות של ארה"ב (Stem cells and the future research directions. Nat. Inst, of Health USA) ממליצים על מחקר מפורט יותר של תכונותיהם של תאי גזע בניסויים על מודלים ביולוגיים מתאימים ועל הערכה אובייקטיבית של כל ההשלכות של השתלה, ורק לאחר מכן להשתמש בתאי גזע במרפאה.
נקבע כי תאי גזע הם חלק מנגזרות הרקמה של כל שלוש שכבות הנבט. תאי גזע נמצאים ברשתית, בקרנית, באפידרמיס העור, במח העצם ובדם ההיקפי, בכלי דם, במוך השן, בכליות, באפיתל מערכת העיכול, בלבלב ובכבד. באמצעות שיטות מודרניות, הוכח כי תאי גזע עצביים ממוקמים במוח ובחוט השדרה של אדם מבוגר. נתונים סנסציוניים אלה משכו תשומת לב מיוחדת מצד מדענים ותקשורת, שכן נוירונים במוח שימשו כדוגמה קלאסית לאוכלוסיית תאים סטטית שאינה משוחזרת. הן בתקופות המוקדמות והן בתקופות המאוחרות של אונטוגנזה, נוירונים, אסטרוציטים ואוליגודנדרוציטים נוצרים במוח של בעלי חיים ובני אדם עקב תאי גזע עצביים (תאי גזע: התקדמות מדעית וכיווני מחקר עתידיים. המכון הלאומי לבריאות ארה"ב).
עם זאת, בתנאים רגילים, הפלסטיות של תאי גזע מרקמות סופיות אינה באה לידי ביטוי. כדי לממש את הפוטנציאל הפלסטי של תאי גזע מרקמות סופיות, יש לבודד אותם ולאחר מכן לגדל אותם במצע עם ציטוקינים (LIF, EGF, FGF). יתר על כן, נגזרות של תאי גזע משתלבות בהצלחה רק כאשר הן מושתלות בגוף של בעל חיים עם מערכת חיסונית מדוכאת (קרינת γ, ציטוסטטיקה, בוסולפן וכו'). עד כה, לא הושגו ראיות משכנעות ליישום פלסטיות של תאי גזע בבעלי חיים שלא נחשפו לקרינה או להשפעות אחרות הגורמות לדיכוי חיסוני עמוק.
בתנאים כאלה, הפוטנציאל המסוכן של תאי...
השפעות מועילות של תאי גזע
תוצאות ראשוניות של ניסויים קליניים מאשרות את ההשפעה המיטיבה של תאי גזע על המטופל, אך עדיין אין מידע על ההשפעות ארוכות הטווח של השתלת תאים. הספרות בתחילה נשלטה על ידי דיווחים על תוצאות חיוביות של השתלת שברי מוח עובריים במחלת פרקינסון, אך לאחר מכן החלו להופיע נתונים המכחישים את ההשפעה הטיפולית היעילה של רקמת עצב עוברית או עוברית המושתלת למוח של מטופלים.
באמצע המאה ה-20 התגלה לראשונה שחזור מערכת ההמטופויאזה בבעלי חיים שעברו קרינה קטלנית לאחר עירוי תוך ורידי של תאי מח עצם, ובשנת 1969 ביצע החוקר האמריקאי ד. תומאס את השתלת מח עצם הראשונה בבני אדם. חוסר הידע על מנגנוני אי-התאימות החיסונית של תאי מח עצם תורם ומקבל באותה תקופה הוביל לתמותה גבוהה עקב כישלון תכוף של השתלות והתפתחות תגובת השתל נגד המארח. גילוי קומפלקס ההיסטו-תאימות העיקרי, הכולל אנטיגנים של לויקוציטים אנושיים (HbA), ושיפור שיטות ההקלדה שלהם אפשרו להגדיל משמעותית את ההישרדות לאחר השתלת מח עצם, מה שהוביל לשימוש נרחב בשיטת טיפול זו באונקהמטולוגיה. עשור לאחר מכן בוצעו ההשתלות הראשונות של תאי גזע המטופויאטיים (HSCs) שהתקבלו מדם פריפרי באמצעות לוקפרזה. בשנת 1988, דם טבורי שימש לראשונה כמקור לתאי דם טבורי (HSCs) בצרפת לטיפול בילד עם אנמיה פנקוני, ומאז סוף שנת 2000 פורסמו דיווחים בעיתונות על יכולתם של HSCs להתמיין לתאים מסוגי רקמות שונים, דבר שעשוי להרחיב את היקף היישום הקליני שלהם. עם זאת, התברר שחומר ההשתלה, יחד עם HSCs, מכיל מספר משמעותי של זיהומים תאיים שאינם המטופויאטיים בעלי אופי ותכונות שונות. בהקשר זה, מפותחות שיטות לטיהור ההשתלה וקריטריונים להערכת טוהר התאים שלה. בפרט, נעשה שימוש באימונוברציה חיובית של תאי CD34+, המאפשרת בידוד של HSCs באמצעות נוגדנים חד שבטיים.
סיבוכים של טיפול בתאי גזע
סיבוכים בהשתלת מח עצם הם לרוב המטולוגיים וקשורים לתקופה ארוכה של פנציטופניה יאטרוגנית. סיבוכים זיהומיים, אנמיה ודימומים מתפתחים לרוב. בהקשר זה, חשוב ביותר לבחור את אופן איסוף, עיבוד ואחסון מח עצם אופטימלי לשימור מקסימלי של תאי גזע, אשר יבטיחו שיקום מהיר ויציב של ההמטופואזה. בעת אפיון השתלה, כיום מעריכים בדרך כלל את הפרמטרים הבאים: מספר התאים המונוגרעיניים ו/או בעלי הגרעין, יחידות יוצרות מושבות ותכולת התאים החיוביים ל-CD34. למרבה הצער, אינדיקטורים אלה מספקים רק הערכה עקיפה של היכולת ההמטופואטית האמיתית של אוכלוסיית תאי הגזע של ההשתלה. כיום, אין פרמטרים מדויקים לחלוטין לקביעת יעילותה של השתלה לשיקום ארוך טווח של ההמטופואזה בחולים, אפילו עם השתלת מח עצם אוטולוגית. פיתוח קריטריונים כלליים קשה ביותר בשל היעדר סטנדרטים מחמירים לעיבוד, שימור קריוגני ובדיקה של ההשתלה. בנוסף, יש לקחת בחשבון את מגוון הגורמים המשפיעים על הפרמטרים של שיקום מוצלח של המטופויזה בכל מטופל בנפרד. בהשתלת מח עצם אוטולוגית, החשובים שבהם הם מספר סבבי הכימותרפיה הקודמים, מאפייני משטר ההתניה, תקופת המחלה בה נאסף מח העצם, והתוכניות לשימוש בגורמי גירוי מושבות בתקופה שלאחר ההשתלה. בנוסף, אין לשכוח כי כימותרפיה שקדמה לאיסוף ההשתלה יכולה להיות בעלת השפעה שלילית על תאי גזע מח עצם.
שכיחות הסיבוכים הרעילים החמורים עולה משמעותית במהלך השתלת מח עצם אלוגנית. בהקשר זה, נתונים סטטיסטיים על השתלת מח עצם אלוגנית בתלסמיה מעניינים. דוחות קבוצת השתלות מח עצם האירופית רשמו כ-800 השתלות מח עצם לחולים עם תלסמיה מייג'ור. השתלה אלוגנית בתלסמיה מבוצעת ברוב המכריע של המקרים מאחים זהים ל-HLA, דבר הקשור לסיבוכים חמורים ותמותה גבוהה במהלך השתלת חומר תאי גזע מתורמים קרובים תואמים חלקית או לא קשורים תואמים. כדי למזער את הסיכון לסיבוכים זיהומיים קטלניים, החולים מוצבים בקופסאות אספטיות מבודדות עם זרימת אוויר למינרית ומקבלים תזונה דלת או א-בקטריאלית. לצורך חיטוי חיידקי של המעי, נקבעות צורות לא נספגות של אנטיביוטיקה ותרופות נגד פטריות באופן פעיל. למניעה, אמפוטריצין B ניתן דרך הווריד. מניעת זיהומים סיסטמיים מחוזקת באמצעות אמיקצין וצפטזידים, הנרשמים יום לפני ההשתלה, תוך המשך הטיפול עד לשחרור המטופל. כל מוצרי הדם עוברים קרינה במינון של 30 Gy לפני עירוי. הזנה פרנטרלית במהלך ההשתלה היא תנאי הכרחי ומתחילה מיד לאחר הגבלת צריכת המזון באופן טבעי.
מספר סיבוכים קשורים לרעילות הגבוהה של תרופות מדכאות חיסון, אשר לעיתים קרובות גורמות לבחילות, הקאות ודלקת מוקוזיס, נזק לכליות ודלקת ריאות אינטרסטיציאלית. אחד הסיבוכים החמורים ביותר של כימותרפיה הוא מחלת ורידים-חסימתית של הכבד, המובילה למוות בתקופה המוקדמת שלאחר ההשתלה. גורמי סיכון לפקקת ורידים של מערכת הפורטל של הכבד כוללים את גיל החולים, נוכחות דלקת כבד ופיברוזיס כבד, כמו גם טיפול מדכא חיסון לאחר השתלת מח עצם. מחלת ורידים-חסימתית מסוכנת במיוחד בתלסמיה, המלווה בהמוזידרוזיס של הכבד, דלקת כבד ופיברוזיס - נלווים תכופים לטיפול בעירויי דם. פקקת ורידים של מערכת הפורטל של הכבד מתפתחת 1-2 שבועות לאחר ההשתלה ומאופיינת בעלייה מהירה בתכולת פעילות הבילירובין והטרנסאמינאז בדם, התקדמות של הפטומגליה, מיימת, אנצפלופתיה וכאב בבטן העליונה. מבחינה היסטולוגית, חומר הנתיחה שלאחר המוות מגלה נזק לאנדותל, דימומים תת-אנדותליאליים, נזק להפטוציטים צנטרילובולריים, חסימה טרומבוטית של ורידים וורידים מרכזיים של הכבד. מקרים של דום לב קטלני הקשור להשפעות הרעילות של ציטוסטטיקה תוארו בחולים עם תלסמיה.
בתקופה שלפני ההשתלה, ציקלופוספמיד ובוסולפן גורמים לעיתים קרובות לדלקת שלפוחית השתן רעילה-דימומית עם שינויים פתולוגיים בתאי האוראופיתל. השימוש בציקלוספורין A בהשתלת מח עצם מלווה לעיתים קרובות ברעילות כלייתית ונוירוטוקסית, תסמונת יתר לחץ דם, אצירת נוזלים בגוף וציטוליזה של הפטוציטים. תפקוד לקוי של המיניות והרבייה נצפה לעתים קרובות יותר אצל נשים. אצל ילדים צעירים, התפתחות ההתבגרות בדרך כלל אינה מושפעת לאחר ההשתלה, אך אצל ילדים גדולים יותר, פתולוגיה של התפתחות התחום המיני יכולה להיות חמורה מאוד - עד כדי עקרות. סיבוכים הקשורים ישירות להשתלה עצמה כוללים דחייה של תאי מח עצם אלוגניים, אי-תאימות ABO, צורות חריפות וכרוניות של מחלת שתל נגד מאכסן.
בחולים שעברו השתלת מח עצם שאינה תואמת ABO, איזואגגלוטינינים של תורם מארח לעומת ABO מיוצרים במשך 330-605 ימים לאחר ההשתלה, מה שעלול להוביל להמוליזה ממושכת ולהגביר באופן דרמטי את הצורך בעירויי דם. סיבוך זה נמנע על ידי עירוי תאי דם אדומים מסוג 0 בלבד. לאחר ההשתלה, חלק מהחולים חווים נויטרופניה אוטואימונית, טרומבוציטופניה או פנציטופניה, הדורשות כריתת טחול לתיקון.
ב-35-40% מהנמענים, מחלת שתל נגד מארח חריפה מתפתחת תוך 100 ימים לאחר השתלת מח עצם אלוגנית זהה ל-HLA. דרגת המעורבות של העור, הכבד והמעיים משתנה מפריחה, שלשולים והיפרבילירובינמיה בינונית ועד קילוף עור, חסימת מעיים ואי ספיקת כבד חריפה. בחולים עם תלסמיה, שכיחות מחלת שתל נגד מארח חריפה דרגה I לאחר השתלת מח עצם היא 75%, ודרגה II ומעלה היא 11-53%. מחלת שתל נגד מארח כרונית כתסמונת איברים מרובים מערכתית מתפתחת בדרך כלל תוך 100-500 ימים לאחר השתלת מח עצם אלוגנית ב-30-50% מהחולים. העור, חלל הפה, הכבד, העיניים, הוושט ודרכי הנשימה העליונות מושפעים. מבחינים בין צורה מוגבלת של מחלת שתל נגד מארח כרונית, כאשר העור ו/או הכבד מושפעים, לבין צורה נרחבת, כאשר נגעי עור כלליים משולבים עם דלקת כבד כרונית אגרסיבית, נגעים בעיניים, בלוטות הרוק או כל איבר אחר. מוות נגרם לעיתים קרובות מסיבוכים זיהומיים כתוצאה מכשל חיסוני חמור. בתלסמיה, צורה קלה של מחלת שתל נגד מאכסן כרונית מתרחשת ב-12%, צורה בינונית ב-3%, וצורה חמורה ב-0.9% ממקבלי מח עצם HLA אלוגני תואם. סיבוך חמור של השתלת מח עצם הוא דחיית שתל, המתפתחת 50-130 יום לאחר הניתוח. תדירות הדחייה תלויה במשטר ההתניה. בפרט, בחולים עם תלסמיה שקיבלו רק מתוטרקסט במהלך תקופת ההכנה, נצפתה דחייה של השתלת מח עצם ב-26% מהמקרים, עם שילוב של מתוטרקסט עם ציקלוספורין A - ב-9% מהמקרים, ועם מתן ציקלוספורין A בלבד - ב-8% מהמקרים (Gaziev et al., 1995).
סיבוכים זיהומיים לאחר השתלת מח עצם נגרמים על ידי וירוסים, חיידקים ופטריות. התפתחותם קשורה לנויטרופניה עמוקה הנגרמת על ידי תרופות כימותרפיות במהלך תקופת ההתניה, נזק למחסומי ריריות על ידי ציטוסטטיקה ותגובת שתל נגד מאכסן. בהתאם לזמן ההתפתחות, נבדלים שלושה שלבים של סיבוכים זיהומיים. בשלב הראשון (מתפתח בחודש הראשון לאחר ההשתלה), שולטים נזק למחסומי ריריות ונויטרופניה, שלעתים קרובות מלווים בזיהומים ויראליים (הרפס, וירוס אפשטיין-בר, ציטומגלווירוס, אבעבועות רוח), כמו גם זיהומים הנגרמים על ידי חיידקים גרם-חיוביים וגרם-שליליים, פטריות קנדידה, אספרגילי. בתקופה המוקדמת שלאחר ההשתלה (החודשים השני והשלישי לאחר ההשתלה), הזיהום החמור ביותר הוא ציטומגלווירוס, שלעתים קרובות מוביל למוות של חולים בשלב השני של סיבוכים זיהומיים. בתלסמיה, זיהום ציטומגלווירוס לאחר השתלת מח עצם מתפתח ב-1.7-4.4% מהנמענים. השלב השלישי נצפה בתקופה המאוחרת שלאחר ההשתלה (שלושה חודשים לאחר הניתוח) ומאופיין בכשל חיסוני משולב חמור. זיהומים הנגרמים על ידי אבעבועות רוח, סטרפטוקוקוס, פנאומוציסטיס קריני, נייסריה מנינגיטידיס, המופילוס אינפלואנזה ווירוסים הפטוטרופיים שכיחים בתקופה זו. בתלסמיה, תמותה בחולים לאחר השתלת מח עצם קשורה לאלח דם חיידקי ופטרייתי, דלקת ריאות אינטרסטיציאלית אידיופטית וציטומגלווירוסית, תסמונת מצוקה נשימתית חריפה, אי ספיקת לב חריפה, טמפונדה לבבית, דימום מוחי, מחלת כבד וסותמת ורידים ומחלת שתל נגד מאכסן חריפה.
כיום, הושגו הצלחות מסוימות בפיתוח שיטות לבידוד אוכלוסיות טהורות של תאי גזע המטופויאטיים ממח עצם. הטכניקה להשגת דם עוברי מחבל הטבור שופרה, ונוצרו שיטות לבידוד תאים המטופויאטיים מדם טבורי. ישנם דיווחים בעיתונות המדעית לפיהם תאי גזע המטופויאטיים מסוגלים להתרבות כאשר הם מגודלים במצע עם ציטוקינים. בעת שימוש בביו-ריאקטורים שתוכננו במיוחד להרחבת תאי גזע המטופויאטיים, הביומסה של תאי גזע המטופויאטיים המבודדים ממח עצם, דם היקפי או דם טבורי עולה משמעותית. האפשרות להרחיב תאי גזע המטופויאטיים היא צעד חשוב לקראת הפיתוח הקליני של השתלת תאים.
עם זאת, לפני ריבוי תאי גזע המטופויאטיים במבחנה, יש צורך לבודד אוכלוסייה הומוגנית של תאי גזע המטופויאטיים. בדרך כלל מושגת פעולה זו באמצעות סמנים המאפשרים סימון סלקטיבי של תאי גזע המטופויאטיים עם נוגדנים חד שבטיים המקושרים קוולנטית לתווית פלואורסצנטית או מגנטית ובידודם באמצעות מיון תאים מתאים. יחד עם זאת, סוגיית המאפיינים הפנוטיפיים של תאי גזע המטופויאטיים לא נפתרה סופית. A. Petrenko, V. Grishchenko (2003) רואים תאים עם אנטיגנים CD34, AC133 ו-Thyl על פני השטח שלהם וללא סמני CD38, HLA-DR או סמני התמיינות אחרים (תאים עם פנוטיפ CD34+Liir) כמועמדים לתאי גזע המטופויאטיים. סמני שושלת (Lin) כוללים גליקופורין A (GPA), CD3, CD4, CD8, CD10, CD14, CD16, CD19, CD20 (Muench, 2001). תאים בעלי פנוטיפ CD34+CD45RalüW CD71low, כמו גם פנוטיפ CD34+Thyl+CD38low/c-kit/low, נחשבים מבטיחים להשתלה.
סוגיית מספר תאי הגזע ההמטופויאטיים המספיקים להשתלה יעילה נותרה בעייתית. נכון לעכשיו, מקורות תאי הגזע ההמטופויאטיים הם מח עצם, דם היקפי ודם טבורי, וכבד עוברי. גידול תאי גזע המטופויאטיים מושג על ידי גידולם בנוכחות תאי אנדותל וגורמי גדילה המטופויאטיים. בפרוטוקולים שונים, משתמשים במיאלופרוטאינים, SCF, אריתרופויאטין, גורמי גדילה דמויי אינסולין, קורטיקוסטרואידים ואסטרוגנים כדי לגרום להתרבות תאי גזע המטופויאטיים. בעת שימוש בשילובי ציטוקינים במבחנה, ניתן להשיג עלייה משמעותית במאגר תאי הגזע ההמטופויאטיים עם שיא בתפוקה שלהם בסוף השבוע השני של הגידול.
באופן מסורתי, השתלת תאי גזע המטופויאטיים מדם טבורי משמשת בעיקר לטיפול בהמובלסטוזות. עם זאת, המינון המינימלי של תאים המטופויאטיים הנדרש להשתלת תאי דם טבורי מוצלחת הוא 3.7 x 107 תאים בעלי גרעין לכל 1 ק"ג ממשקל גוף הנמען. שימוש במספר קטן יותר של תאי גזע המטופויאטיים מדם טבורי מגביר משמעותית את הסיכון לכשל השתל ולהישנות המחלה. לכן, השתלת תאי גזע המטופויאטיים מדם טבורי משמשת בעיקר לטיפול בהמובלסטוזות בילדים.
למרבה הצער, עדיין אין סטנדרטים לרכישה או פרוטוקולים סטנדרטיים לשימוש קליני של תאי דם טבורי. לפיכך, תאי גזע מדם טבורי עצמם אינם מקור מוכר מבחינה חוקית לתאים המטופויאטיים להשתלה. בנוסף, אין נורמות אתיות או משפטיות המסדירות את פעילותם וארגון בנקי דם טבורי, הקיימים בחו"ל. בינתיים, למען השתלה בטוחה, יש לנטר בקפידה את כל דגימות הדם הטבורי. לפני איסוף דם מאישה בהריון, יש לקבל את הסכמתה. יש לבדוק כל אישה בהריון לנשיאת HBsAg, נוכחות נוגדנים לנגיפי הפטיטיס C, HIV ועגבת. יש לבדוק כל דגימת דם טבורי כסטנדרט למספר התאים הגרעיניים, CD34+ ויכולת יצירת מושבות. בנוסף, מתבצעת הקלדת HbA1c, קביעת סוג הדם לפי ABO ושייכותו לפי גורם Rh. הליכי הבדיקה הנדרשים הם תרבית בקטריולוגית לסטריליות, בדיקות סרולוגיות לזיהומי HIV-1 ו-HIV-2, HBsAg, הפטיטיס C נגיפית, זיהום ציטומגלווירוס, HTLY-1 ו-HTLY-II, עגבת וטוקסופלזמוזיס. בנוסף, מבוצעת תגובת שרשרת פולימראזית לגילוי זיהומי ציטומגלווירוס ו-HIV. נראה כי מומלץ להשלים את פרוטוקולי הבדיקה עם ניתוח של דם טבורי GSC כדי לגלות מחלות גנטיות כגון α-תלסמיה, אנמיה חרמשית, חוסר באדנוזין דאמינאז, אגמגלובולינמיה על שם ברוטון, מחלות הורלר ופונטר.
השלב הבא בהכנה להשתלה הוא שאלת שימור תאי הגזע ההמטופויאטיים. ההליכים המסוכנים ביותר לקיומם של התאים במהלך הכנתם הם הקפאה והפשרה. בעת הקפאת תאים המטופויאטיים, חלק משמעותי מהם עלול להיהרס עקב היווצרות גבישים. חומרים מיוחדים - קריופרוטקטורים - משמשים להפחתת אחוז תמותת התאים. לרוב, DMSO משמש כקריופרוטקטור בריכוז סופי של 10%. עם זאת, DMSO בריכוז כזה מאופיין בהשפעה ציטוטוקסית ישירה, המתבטאת גם בתנאי חשיפה מינימלית. ירידה בהשפעה הציטוטוקסית מושגת על ידי שמירה קפדנית על טמפרטורת אפס של מצב החשיפה, וכן עמידה בתקנות לעיבוד החומר במהלך ואחרי ההפשרה (מהירות כל המניפולציות, שימוש בהליכי שטיפה מרובים). אין להשתמש בריכוזי DMSO של פחות מ-5%, מכיוון שזה גורם למוות מסיבי של תאים המטופויאטיים במהלך תקופת ההקפאה.
נוכחותם של זיהומים של תאי גזע דם אדומים בתערובת התרחיף של תאי גזע המטופויאטיים יוצרת סיכון להתפתחות תגובת אי-תאימות לאנטיגנים של תאי גזע אדומים. במקביל, כאשר מוסרים תאי גזע אדומים, אובדן התאים ההמטופויאטיים עולה משמעותית. בהקשר זה, הוצעה שיטה של בידוד לא מופרד של תאי גזע המטופויאטיים. במקרה זה, נעשה שימוש בתמיסת DMSO של 10% וקירור בקצב קבוע (GS/min) ל-80°C- כדי להגן על תאים בעלי גרעין מפני ההשפעות המזיקות של טמפרטורות נמוכות, ולאחר מכן תרחיף התאים מוקפא בחנקן נוזלי. ההערכה היא ששיטת שימור קריוגנית זו גורמת לליזיס חלקי של תאי גזע אדומים, ולכן דגימות דם אינן דורשות פירוק. לפני ההשתלה, תרחיף התאים מופשר, נשטף מהמוגלובין חופשי ו-DMSO בתמיסה של אלבומין אנושי או בסרום דם. שימור קודמיהם של תאי גזע המטופויאטיים בשיטה זו אכן גבוה יותר מאשר לאחר פירוק דם טבורי, אך הסיכון לסיבוכי עירוי עקב עירוי של תאי גזע אדומים שאינם תואמים ל-ABO נותר.
הקמת מערכת בנקאית לאחסון דגימות HSC שנבדקו וטופלו על ידי HLA יכולה לפתור את הבעיות הנ"ל. עם זאת, הדבר דורש פיתוח נורמות אתיות ומשפטיות, אשר כעת רק נידונות. לפני יצירת רשת בנקאית, יש צורך לאמץ מספר תקנות ומסמכים בנושא סטנדרטיזציה של נהלים לאיסוף, פירוק, בדיקה וטיפוס, וכן שימור קריוגני של HSC. תנאי חובה לפעילות יעילה של בנקי HSC הוא ארגון בסיס מחשב לאינטראקציה עם הרישומים של איגוד תורמי מח העצם העולמי (WMDA) ותוכנית תורמי מח העצם הלאומית של ארצות הברית (NMDP).
בנוסף, יש צורך לייעל ולתקנן את שיטות הרחבת תאי HSC במבחנה (in vitro), בעיקר תאי דם טבורי. הרחבת תאי HSC מדם טבורי נחוצה כדי להגדיל את מספר הנמענים הפוטנציאליים התואמים למערכת HLA. בשל הכמויות הקטנות של דם טבורי, מספר תאי ה-HSC הכלולים בו בדרך כלל אינו מסוגל להבטיח אכלוס מחדש של מח עצם בחולים בוגרים. יחד עם זאת, כדי לבצע השתלות שאינן קשורות, יש צורך בגישה למספר מספיק של דגימות HSC מסווגות (מ-10,000 עד 1,500,000 לנמען).
השתלת תאי גזע המטופויאטיים אינה מבטלת את הסיבוכים הנלווים להשתלת מח עצם. ניתוח מראה כי עם השתלת תאי גזע מדם טבורי, מתפתחות צורות חמורות של מחלת שתל נגד מאכסן חריפה ב-23% מהמקבלים, וצורות כרוניות ב-25% מהמקבלים. בחולים אונקוההמטולוגיים, נצפות התקפים של לוקמיה חריפה במהלך השנה הראשונה לאחר השתלת תאי גזע מדם טבורי ב-26% מהמקרים.
בשנים האחרונות, שיטות להשתלת תאי גזע המטופויאטיים היקפיים מתפתחות באופן אינטנסיבי. תכולת תאי גזע המטופויאטיים בדם היקפי כה קטנה (1 תאי גזע המטופויאטיים לכל 100,000 תאי דם) עד שבידודם ללא הכנה מיוחדת אינו הגיוני. לכן, התורם מקבל תחילה תרופה לגירוי שחרור תאי מח העצם ההמטופויאטיים לדם. לשם כך, משתמשים בתרופות רחוקות מלהיות מזיקות כמו ציקלופוספמיד וגורם מגרה מושבות גרנולוציטים. אך גם לאחר הליך גיוס תאי גזע המטופויאטיים לדם היקפי, תכולת תאי CD34+ בו אינה עולה על 1.6%.
לצורך ניוד תאי גזע המטופויאטיים במרפאה, נעשה שימוש לרוב ב-S-SEC, המאופיין בסבילות טובה יחסית, למעט הופעה כמעט טבעית של כאבי עצמות. יש לציין כי השימוש במפריצי דם מודרניים מאפשר בידוד יעיל של תאי גזע המטופויאטיים. עם זאת, בתנאי המטופויזה רגילים, יש לבצע לפחות 6 הליכים כדי להשיג מספר מספיק של תאי גזע המטופויאטיים, בעלי יכולת אכלוס מחדש דומה לתרחיף מח עצם. כל הליך כזה דורש עיבוד של 10-12 ליטר דם במפריד, דבר שעלול לגרום לטרומבוציטופניה ולוקופניה. הליך ההפרדה כרוך בהחדרת נוגד קרישה (נתרן ציטרט) לתורם, דבר שאינו שולל, עם זאת, הפעלת מגע של טסיות במהלך צנטריפוגה חוץ גופית. גורמים אלה יוצרים תנאים להתפתחות סיבוכים זיהומיים ודימומים. חיסרון נוסף של השיטה הוא השונות המשמעותית של תגובת הגיוס, המחייבת ניטור של תכולת ה-HSCs בדם ההיקפי של התורמים, דבר הכרחי לקביעת רמתם המקסימלית.
השתלה אוטוגנית של תאי גזע המטופויאטיים, בניגוד להשתלה אלוגנית, מבטלת לחלוטין את התפתחות תגובת הדחייה. עם זאת, חיסרון משמעותי של השתלה אוטואוטית של תאי גזע המטופויאטיים, אשר מגביל את טווח האינדיקציות ליישומה, הוא הסבירות הגבוהה לעירוי חוזר של תאי שיבוט לויקמיים עם ההשתלה. בנוסף, היעדר אפקט "שתל מול גידול" בתיווך החיסון מגביר משמעותית את תדירות ההתקפים של מחלת דם ממאירה. לכן, השיטה הרדיקלית היחידה לחיסול המטופויזה שבטית ניאופלסטית ושיקום המטופויזה פוליקלונאלית תקינה בתסמונות מיאלודיספלסטיות נותרה פוליכימותרפיה אינטנסיבית עם השתלת המטופויזה אלוגנית.
אבל אפילו במקרה זה, הטיפול ברוב מקרי ההמובלסטוזיס מכוון רק להגדלת זמן ההישרדות של החולים ולשיפור איכות חייהם. על פי מספר מחקרים גדולים, הישרדות ארוכת טווח ללא הישנות לאחר השתלת תאי גזע מסוג HSC מושגת ב-40% מהחולים האונקוהמטולוגיים. כאשר משתמשים בתאי גזע של אח או אח תואם HLA, התוצאות הטובות ביותר נצפות בחולים צעירים עם היסטוריה קצרה של המחלה, ספירת תאי בלאסט של עד 10% וציטוגנטיקה חיובית. למרבה הצער, התמותה הקשורה להליך השתלת תאי גזע מסוג HSC בחולים עם מחלות מיאלודיספלסטיות נותרה גבוהה (ברוב הדיווחים - כ-40%). תוצאות העבודה בת 10 השנים של התוכנית הלאומית לתרומת מח עצם בארה"ב (510 חולים, גיל חציוני - 38 שנים) מצביעות על כך שההישרדות ללא הישנות במשך שנתיים היא 29% עם סבירות נמוכה יחסית להישנות (14%). עם זאת, התמותה הקשורה להליך של השתלת תאי HSC מתורם לא קשור היא גבוהה ביותר ומגיעה ל-54% על פני תקופה של שנתיים. תוצאות דומות התקבלו במחקר אירופאי (118 חולים, גיל חציוני - 24 שנים, הישרדות ללא הישנות לאחר שנתיים - 28%, הישנות - 35%, תמותה - 58%).
במהלך טיפולי כימותרפיה אינטנסיביים עם שיקום לאחר מכן של ההמטופויזה עם תאים המטופויאטיים אלוגניים, מתרחשים לעיתים קרובות סיבוכים אימונו-המטולוגיים וסיבוכים של עירוי דם. הם נובעים בעיקר מהעובדה שקבוצות דם אנושיות עוברות בתורשה באופן עצמאי ממולקולות MHC. לכן, גם אם התורם והמקבל תואמים לאנטיגנים העיקריים של HLA, תאי הדם האדומים שלהם עשויים להיות בעלי פנוטיפים שונים. מבחינים בין אי-התאמה "גדולה", כאשר למקבל יש נוגדנים קיימים מראש לאנטיגנים של תאי הדם האדומים של התורם, לבין אי-התאמה "מינורית", כאשר לתורם יש נוגדנים לאנטיגנים של תאי הדם האדומים של המקבל. מקרים של שילוב של אי-התאמה "גדולה" ו"מינורית" אפשריים.
תוצאות ניתוח השוואתי של היעילות הקלינית של השתלת תאי גזע המטופויאטיים מדם טבורי באמצעות אלו-השתלה, מצביעות על כך שבילדים לאחר השתלת תאי גזע המטופויאטיים מדם טבורי, הסיכון לפתח תגובת שתל נגד מאכסן מצטמצם משמעותית, אך נצפית תקופת התאוששות ארוכה יותר של מספר הנויטרופילים והטסיות עם שכיחות גבוהה יותר של תמותה 100 יום לאחר ההשתלה.
מחקר הגורמים לתמותה מוקדמת אפשר להבהיר את התוויות נגד להשתלת HSC אלוגנית, שביניהן החשובות ביותר הן:
- נוכחות של בדיקות חיוביות לזיהום ציטומגלווירוס אצל הנמען או התורם (ללא טיפול מונע);
- מחלת קרינה חריפה;
- נוכחות או אפילו חשד לנוכחות של זיהום פטרייתי אצל חולה (ללא ביצוע טיפול מונע מוקדם מערכתי עם תרופות קוטלי פטריות);
- המובלסטוזות, בהן חולים קיבלו טיפול ארוך טווח בציטוסטטיקה (בשל הסבירות הגבוהה לדום לב פתאומי ואי ספיקת איברים מרובת איברים);
- השתלה מתורמים שאינם זהים ל-HLA (ללא פרופילקטיקה של תגובת שתל נגד מאכסן חריפה עם ציקלוספורין A);
- דלקת כבד נגיפית כרונית C (בשל הסיכון הגבוה לפתח מחלת ורידים-חסימתית של הכבד).
לפיכך, השתלת שתל מוליד תאי כבד (HSC) עלולה לגרום לסיבוכים חמורים, שלעתים קרובות מובילים למוות. בתקופה המוקדמת (עד 100 יום לאחר ההשתלה), אלה כוללים סיבוכים זיהומיים, מחלת שתל נגד מאכסן חריפה, דחיית שתל (כשל של HSCs של התורם), מחלת כבד וסותמת ורידים, כמו גם נזק לרקמות הנגרם מרעילות משטר ההתניה, המאופיין בקצב שיפוץ גבוה (עור, אנדותל כלי דם, אפיתל מעי). סיבוכים של התקופה המאוחרת שלאחר ההשתלה כוללים מחלת שתל נגד מאכסן כרונית, התקפים חוזרים של המחלה הבסיסית, עיכוב בגדילה אצל ילדים, תפקוד לקוי של מערכת הרבייה ובלוטת התריס ונזק לעיניים.
לאחרונה, בקשר לפרסומים על הפלסטיות של תאי מח עצם, עלה הרעיון של שימוש בתאי מח עצם מושתלים (HSCs) לטיפול בהתקפי לב ובמחלות אחרות. למרות שכמה ניסויים בבעלי חיים תומכים באפשרות זו, יש לאשר את המסקנות לגבי הפלסטיות של תאי מח עצם. נסיבות אלו צריכות להילקח בחשבון על ידי אותם חוקרים המאמינים שתאי מח עצם אנושיים מושתלים הופכים בקלות לתאי שריר שלד, שריר הלב או תאי מערכת העצבים המרכזית. ההשערה שתאי מח עצם מושתלים הם מקור תאי טבעי להתחדשות איברים אלה דורשת ראיות רציניות.
בפרט, פורסמו התוצאות הראשונות של מחקר פתוח אקראי של V. Belenkov (2003). מטרתו הייתה לחקור את ההשפעה של C-SvK (כלומר, גיוס של HSCs אוטולוגיים לדם) על המצב הקליני, ההמודינמי והנוירו-הומורלי של חולים עם אי ספיקת לב כרונית בינונית עד חמורה, וכן להעריך את בטיחותו על רקע טיפול סטנדרטי (מעכבי אנזים המרת אנגיוטנסין, חוסמי בטא, משתנים, גליקוזידים לבביים). בפרסום הראשון של תוצאות המחקר, מחברי התוכנית מציינים כי הטיעון היחיד לטובת O-SvK הוא תוצאות הטיפול בחולה אחד, שהראה שיפור בלתי מעורער בכל הפרמטרים הקליניים וההמודינמיים על רקע טיפול בתרופה זו. עם זאת, התיאוריה של גיוס HSCs לזרם הדם ולאחר מכן התחדשות שריר הלב באזור שלאחר האוטם לא אושרה - אפילו בחולה עם דינמיקה קלינית חיובית, אקו לב במאמץ עם דובוטמין לא גילה את הופעת אזורי שריר הלב בר-קיימא באזור הצלקת.
יש לציין כי נכון לעכשיו, אין מספיק נתונים כדי להמליץ על טיפול תאי חלופי ליישום נרחב בפרקטיקה הקלינית היומיומית. יש צורך במחקרים קליניים איכותיים ומעוצבים היטב כדי לקבוע את יעילותן של אפשרויות שונות לטיפול תאי רגנרטיבי, לפתח אינדיקציות והתוויות נגד עבורו, כמו גם הנחיות לשימוש משולב בטיפול רגנרטיבי-פלסטי ובטיפול כירורגי או שמרני מסורתי. עדיין אין תשובה לשאלה איזו אוכלוסייה מסוימת של תאי מח עצם (המטופויאטיים של הגזע או הסטרומליים) יכולה להוליד נוירונים וקרדיומיוציטים, וגם לא ברור אילו תנאים תורמים לכך in vivo.
עבודה בתחומים אלה מתבצעת במדינות רבות. בסיכום הסימפוזיון בנושא אי ספיקת כבד חריפה של המכונים הלאומיים לבריאות של ארה"ב, בין שיטות הטיפול המבטיחות, יחד עם השתלת כבד, צוינו השתלת הפטוציטים קסנו- או אלוגניים וחיבור חוץ-גופי של ביו-ריאקטורים עם תאי כבד. ישנן עדויות ישירות לכך שרק הפטוציטים זרים בעלי תפקוד פעיל מסוגלים לספק תמיכה יעילה לכבד של המקבל. לשימוש קליני בהפטוציטים מבודדים, יש צורך ליצור בנק תאים, אשר יקצר משמעותית את הזמן בין בידוד התאים לשימוש בהם. השיטה המקובלת ביותר ליצירת בנק של הפטוציטים מבודדים היא שימור קריוגני של תאי כבד בחנקן נוזלי. בעת שימוש בתאים כאלה במרפאה בחולים עם אי ספיקת כבד חריפה וכרונית, התגלתה השפעה טיפולית גבוהה למדי.
למרות התוצאות האופטימיות והמעודדות של השתלת תאי כבד בניסויים ובפרקטיקה הקלינית, עדיין קיימות בעיות רבות הרחוקות מפתרון. אלו כוללות מספר מוגבל של איברים המתאימים להשגת הפטוציטים מבודדים, שיטות לא יעילות מספיק לבידודם, היעדר שיטות סטנדרטיות לשימור תאי כבד, רעיונות לא ברורים לגבי מנגנוני הגדילה והריבוי של תאים מושתלים, היעדר שיטות נאותות להערכת השתלה או דחייה של הפטוציטים אלוגניים. זה כולל גם את נוכחותה של חסינות השתלה בעת שימוש בתאים אלוגניים וקסנוגניים, אם כי פחות מאשר בהשתלת כבד אורתוטופית, אך דורשת שימוש בדכאי חיסון, אנקפסולציה של הפטוציטים מבודדים או טיפול מיוחד בהם באנזימים. השתלת הפטוציטים מובילה לעיתים קרובות לסכסוך חיסוני בין המקבל לתורם בצורה של תגובת דחייה, הדורשת שימוש בציטוסטטיקה. פתרון אחד לבעיה זו עשוי להיות שימוש בנשאים מיקרופורוזיים פולימריים לבידוד תאי כבד, מה שישפר את הישרדותם, שכן קרום הקפסולה מגן ביעילות על הפטוציטים למרות חיסון המארח.
עם זאת, באי ספיקת כבד חריפה, השתלת הפטוציטים כזו אינה יעילה עקב הזמן הארוך יחסית הנדרש לתאי כבד להשתלב בסביבה חדשה ולהגיע לשלב של תפקוד אופטימלי. מגבלה פוטנציאלית היא הפרשת מרה במהלך השתלה חוץ רחמית של הפטוציטים מבודדים, וכאשר משתמשים בביו-ריאקטורים, מחסום פיזיולוגי משמעותי הוא אי התאמה בין מינים בין חלבונים אנושיים לחלבונים המיוצרים על ידי הפטוציטים קסנוגניים.
ישנם דיווחים בספרות לפיהם השתלה מקומית של תאי גזע סטרומה ממוח עצם מאפשרת תיקון יעיל של פגמים בעצם, ושיקום רקמת העצם במקרה זה מתבצע בצורה אינטנסיבית יותר מאשר עם התחדשות תיקון ספונטנית. מספר מחקרים פרה-קליניים על מודלים ניסיוניים מדגימים באופן משכנע את האפשרות להשתמש בהשתלות תאי סטרומה ממוח עצם באורתופדיה, אם כי נדרשת עבודה נוספת כדי לייעל שיטות אלו, אפילו במקרים הפשוטים ביותר. בפרט, טרם נמצאו תנאים אופטימליים להתפשטות תאי סטרומה אוסטאוגניים ex vivo, והמבנה וההרכב של הנשא האידיאלי שלהם (מטריצה) נותרו בלתי מפותחים. מספר התאים המינימלי הנדרש להתחדשות עצם נפחית לא נקבע.
הוכח שתאי גזע מזנכימליים מפגינים פלסטיות טרנסגרמלית, כלומר, יכולת להתמיין לסוגי תאים שאינם קשורים באופן פנוטיפי לתאי הקו המקורי. בתנאי גידול אופטימליים, שורות תאי גזע סטרומה פוליקלונליים של מח עצם יכולים לעמוד ביותר מ-50 חלוקות במבחנה, מה שמאפשר להשיג מיליארדי תאים סטרומה מ-1 מ"ל של שאיבת מח עצם. עם זאת, אוכלוסיית תאי הגזע המזנכימליים היא הטרוגנית, המתבטאת הן בשונות בגודל המושבות, בקצבי היווצרותם השונים ובגיוון מורפולוגי של סוגי תאים, החל מתאים בצורת כישור דמויי פיברובלסטים ועד תאים שטוחים גדולים. הטרוגניות פנוטיפית נצפית לאחר 3 שבועות בלבד של גידול תאי גזע סטרומה: חלק מהמושבות יוצרות גושים של רקמת עצם, אחרות יוצרות אשכולות של אדיפוציטים, ואחרות, נדירות יותר, יוצרות איים של רקמת סחוס.
השתלת רקמת עצבים עוברית שימשה בתחילה לטיפול במחלות ניווניות של מערכת העצבים המרכזית. בשנים האחרונות, אלמנטים תאיים של נוירוספרות שהתקבלו מתאי גזע עצביים הושתלו במקום רקמת מוח עוברית (Poltavtseva, 2001). הנוירוספרות מכילות קודמנים של נוירונים ונוירוגליה, דבר המעניק תקווה לשיקום תפקודי מוח שאבדו לאחר השתלתן. לאחר השתלת תאי נוירוספרה מפוזרים לאזור הסטריאטום של מוח החולדה, נצפו ריבוי והתמיינותם לנוירונים דופמינרגיים, מה שביטל את האסימטריה המוטורית בחולדות עם המיפרקינסון ניסיוני. עם זאת, במקרים מסוימים, התפתחו גידולים מתאי נוירוספרה, מה שהוביל למותם של בעלי החיים (Bjorklund, 2002).
במרפאה, מחקרים מדוקדקים של שתי קבוצות של חולים, שבהם לא החולים ולא הרופאים שצפו בהם ידעו (מחקר כפול סמיות), שקבוצת חולים אחת עברה השתלת רקמה עוברית עם נוירונים המייצרים דופמין, וקבוצת החולים השנייה עברה ניתוח דמה, הניבו תוצאות בלתי צפויות. חולים שקיבלו השתלת רקמת עצב עוברית לא הרגישו טוב יותר מחולים בקבוצת הביקורת. בנוסף, 5 מתוך 33 חולים פיתחו דיסקינזיה מתמשכת שנתיים לאחר השתלת רקמת עצב עוברית, שלא הייתה קיימת בחולים בקבוצת הביקורת (תאי גזע: התקדמות מדעית וכיווני מחקר עתידיים. המכון הלאומי לבריאות. ארה"ב). אחת הבעיות הלא פתורות במחקר הקליני של תאי גזע עצביים של המוח נותרה ניתוח הסיכויים והמגבלות האמיתיים של השתלת נגזרותיהם לתיקון הפרעות במערכת העצבים המרכזית. ייתכן שנוירונוגנזה בהיפוקמפוס הנגרמת על ידי פעילות התקפים ממושכת, המובילה לארגון מחדש מבני ותפקודי שלו, עשויה להיות גורם בהתפתחות מתקדמת של אפילפסיה. מסקנה זו ראויה לתשומת לב מיוחדת, שכן היא מצביעה על השלכות שליליות אפשריות של יצירת נוירונים חדשים במוח הבוגר ויצירת קשרים סינפטיים חריגים על ידם.
אין לשכוח שגידול במדיה עם ציטוקינים (מיטוגנים) מקרב את מאפייני תאי הגזע לאלה של תאי הגידול, שכן בהם מתרחשים שינויים דומים בוויסות מחזורי התא, וקובעים את היכולת לחלוקה בלתי מוגבלת. השתלת נגזרות מוקדמות של תאי גזע עובריים באדם היא פזיזה, שכן במקרה זה הסיכון להתפתחות גידולים ממאירים גבוה מאוד. הרבה יותר בטוח להשתמש בצאצאים המבוססים יותר שלהם, כלומר, תאי קדם של קווים ממוינים. עם זאת, נכון לעכשיו, טרם פותחה טכניקה אמינה להשגת קווים יציבים של תאים אנושיים המתמיינים בכיוון הרצוי.
השימוש בטכנולוגיות ביולוגיה מולקולרית לתיקון פתולוגיה תורשתית ומחלות אנושיות על ידי שינוי תאי גזע מעורר עניין רב ברפואה המעשית. מאפייני הגנום של תאי הגזע מאפשרים לפתח תוכניות השתלה ייחודיות לתיקון מחלות גנטיות. עם זאת, קיימות מספר מגבלות בתחום זה שיש להתגבר עליהן לפני היישום המעשי של הנדסה גנטית של תאי גזע. ראשית, יש צורך לייעל את תהליך שינוי הגנום של תאי גזע ex vivo. ידוע כי ריבוי ארוך טווח (3-4 שבועות) של תאי גזע מפחית את הטרנספקציה שלהם, ולכן יש צורך במספר מחזורי טרנספקציה כדי להשיג רמה גבוהה של שינוי גנטי שלהם. עם זאת, הבעיה העיקרית קשורה למשך ביטוי הגנים הטיפולי. עד כה, באף מחקר לא תקופת הביטוי היעיל לאחר השתלת תאים שעברו שינוי עלתה על ארבעה חודשים. ב-100% מהמקרים, עם הזמן, ביטוי הגנים שעברו טרנספקציה פוחת עקב השבתת מקדמים ו/או מוות של תאים עם גנום שעברו שינוי.
סוגיה חשובה היא עלות השימוש בטכנולוגיות תאים ברפואה. לדוגמה, הצורך השנתי המשוער למימון הוצאות רפואיות בלבד של יחידה להשתלות מח עצם שנועדה לבצע 50 השתלות בשנה הוא כ-900,000 דולר אמריקאי.
פיתוח טכנולוגיות תאים ברפואה קלינית הוא תהליך מורכב ורב-שלבי הכרוך בשיתוף פעולה בונה בין מרכזים מדעיים וקליניים רב-תחומיים לבין הקהילה הבינלאומית. במקביל, סוגיות של ארגון מדעי של מחקר בתחום הריפוי התאי דורשות תשומת לב מיוחדת. החשובים שבהם הם פיתוח פרוטוקולי מחקר קליני, שליטה על מהימנות הנתונים הקליניים, הקמת מרשם מחקרים לאומי, שילוב בתוכניות בינלאומיות של מחקרים קליניים רב-מרכזיים ויישום התוצאות בפועל הקליני.
לסיכום ההקדמה לבעיות השתלת התאים, ברצוני להביע את התקווה שאיחוד מאמציהם של מומחים אוקראינים מובילים מתחומי מדע שונים יבטיח התקדמות משמעותית במחקר הניסיוני והקליני ויאפשר בשנים הקרובות למצוא דרכים יעילות לספק סיוע לאנשים חולים קשה הזקוקים להשתלת איברים, רקמות ותאים.